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                          當前位置:首頁  >  技術文章  >  LNCaP clone FGC細胞培養攻略

                          LNCaP clone FGC細胞培養攻略

                          更新時間:2025-01-06      點擊次數:641

                          人前列腺癌細胞LNCaP Clone FGC,是1977年從一位50歲白人男性(血型B+)的左鎖骨淋巴結針刺活檢中分離的,當時該患者已確診為轉移性前列腺癌。根據報道,該細胞對5-α-二氫睪酮(生長調節并生成酸性磷酸酶ACP)有響應。

                          01,該細胞并不形成一致的單層,而是形成集落;

                          02,該細胞會使培養基快速變酸,且生長緩慢,故傳代后 48 小時內不應擾動;

                          03,普通TC處理的培養瓶或皿不能使細胞很好的貼壁,培養難度較高,需使用 Corning 的 cellbind 細胞培養瓶(貨號是 3289),或者使用多聚-L-賴氨酸溶液(貨號 PB180523)包被過的培養皿;

                          04,在細胞運輸途中,多數細胞會從培養瓶底分離,大片懸浮在培養基中,按照收貨注意事項處理即可恢復正常。

                          收貨處理方式

                          收貨后,如果發現細胞漂浮或成團,可按下面的步驟進行處理:

                          01,將培養瓶內的所有培養基,轉入無菌離心管,離心收集細胞(1200rpm 3min);

                          02,去掉上清,用PBS重懸細胞,將細胞收集到一個離心管中,PBS震動離心管混勻即可,再次離心(1200rpm 3min);

                          03,去掉上清,加入1ml左右0.25%胰酶,重懸混勻細胞。震動離心管,混勻即可,不能吹打。放入培養箱,消化細胞,消化時間3分鐘左右;

                          04,消化完畢后,用移液槍輕輕吹打細胞懸液,使細胞團分散。加入5ml含血清的培養基,混勻后終止消化,離心(1200rpm 3min);

                          05,去掉上清,加入5-7ml相應培養基混勻,輕輕/反復吹打細胞,接種于無菌T25瓶中(接種容器應提前用對應培養基浸潤)。

                          ▲ 細胞到貨漂浮

                          ▲ 細胞接種量少

                          傳代步驟

                          01,吸出原培養液;

                          02,加入2ml左右PBS,輕輕晃動培養瓶,潤洗細胞,吸出PBS,丟棄;

                          03,加入1ml左右胰酶,輕輕晃動培養瓶,使之浸潤所有細胞;

                          04,放入培養箱消化,消化5分鐘左右,顯微鏡下可看到,細胞塊中間的細胞明顯分離變圓,且自然脫落(全程不要拍打培養瓶);

                          05,加入3ml含血清的培養基,終止消化,輕輕/反復吹打細胞,在顯微鏡下觀察。細胞懸液中,細胞盡量為單個狀態;

                          06,收集細胞懸液,離心(1200rpm 3min)。離心完,吸出上清,丟棄;

                          07,加入新鮮培養基,吹打幾下,混勻細胞即可。按需接種到新培養瓶,補充足量培養基,擰松瓶蓋,或使用透氣瓶蓋進行培養;

                          08,檢查培養箱的二氧化碳、溫度及水盤。

                          傳代比例和頻次

                          推薦1:2~1:4傳代,每4~5天傳代一次。

                          換液步驟

                          吸出舊培養基,沿培養瓶側邊加入新培養基;

                          每3天換液一次。

                          凍存步驟

                          01,配置凍存液。推薦配比:55%(基礎培養基1640)+40%(血清)+5%(DMSO);

                          02,DMSO配置時會放熱,一定要等凍存液冷卻后再使用,避免灼傷細胞;

                          03,細胞消化好后用新鮮培養基中止,制成細胞懸液;

                          04,1200rpm 3min 離心后去上清,盡量吸干凈上清;

                          05,加入配置好的凍存液,重懸,建議一個T25長滿凍存1支,或者細胞計數后,按照2-5×106cells/支的比例凍存;

                          06,將分裝好的凍存液轉入程序凍存盒,放入-80℃冰箱過夜;

                          07,從-80℃冰箱取出凍存管,迅速轉移到液氮,長期保存。

                          復蘇步驟

                          01,將水浴鍋預熱至37℃,準備好干凈的一次性手套,向一個無菌離心管內,加入9ml無菌培養基;

                          02,將細胞從液氮罐中取出,放入一次性手套中,迅速沒入水浴鍋。搖晃凍存管加速溶解,以1分鐘內全部溶解為宜;

                          03,在超凈臺中,將復蘇好的細胞液,加入到裝有新鮮培養基的離心管內,1200rpm/min離心3分鐘,離心完畢,去掉上清;

                          04,用適量與細胞對應的培養基重懸細胞,接入到無菌容器(培養瓶或培養皿)中,補充一定量培養基,放入培養箱培養;

                          05,溶解過程要迅速,已溶解的凍存細胞不能在常溫下存放太久,需盡快離心去除DMSO。


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