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                          原代細(xì)胞分離提取方法及注意事項(xiàng)

                          更新時(shí)間:2024-07-15      點(diǎn)擊次數(shù):945

                          原代細(xì)胞分離提取方法及注意事項(xiàng)

                          原代細(xì)胞是直接取自活組織(例如活組織檢查材料)的細(xì)胞,并建立用于體外生長。這些細(xì)胞經(jīng)歷了非常少的群體倍增,因此與連續(xù)(腫瘤或

                          人工永生化)細(xì)胞系相比,它們更能代表它們所衍生組織的主要功能成分,使得原代細(xì)胞成為更具代表性的體內(nèi)模型。


                          原代細(xì)胞分離是指將組織分散制成細(xì)胞懸液后從中獲取目的細(xì)胞的過程,獲得高純度、高活性的原代細(xì)胞則是很多細(xì)胞實(shí)驗(yàn)成功的關(guān)鍵要素

                          之一,原代細(xì)胞分離的方法有很多種:懸浮離心法、直接組織塊法、酶消化法、非酶消化法、機(jī)械分散法等。


                          人或動物體內(nèi)(或胚胎組織)由于多種細(xì)胞結(jié)合緊密,不利于各個細(xì)胞在體外培養(yǎng)中生長繁殖,即使采用1mm3 的組織塊,也只有少量處于周邊

                          的細(xì)胞可能生存和生長,若需獲取大量細(xì)胞,必須將現(xiàn)有的組織塊充分散開,使細(xì)胞解離出來,常采用的方法如下:


                          一、懸浮細(xì)胞的分離方法

                          組織材料若來自血液、 羊水、胸水或腹水的懸液材料, 簡單的方法是采用 1000r/min 的低速離心 10 分鐘,若懸液量大,可適當(dāng)延長離心

                          時(shí)間,但速度不能太高,延時(shí)也不能太長,以避免擠壓或機(jī)械損傷細(xì)胞,離心沉淀用無鈣、鎂 PBS 洗兩次,用培養(yǎng)基洗一次后,

                          調(diào)整適當(dāng)細(xì)胞濃度后再分瓶培養(yǎng),若選用懸液中某些細(xì)胞,常采用離心后的細(xì)胞分層液,因?yàn)?,?jīng)離心后由于各種細(xì)胞的比重不同可在分層液中形成不同層,這樣可根據(jù)需要收獲目的細(xì)胞。


                          二、實(shí)體組織材料的分離方法

                          對于實(shí)體組織材料,由于細(xì)胞間結(jié)合緊密,為了使組織中的細(xì)胞充分分散,形成細(xì)胞懸液,可采用機(jī)械分散法(物理裂解)和消化分離法。


                          (一)機(jī)械分散法


                          所取材料若纖維成分很少,如腦組織,部分胚胎組織可采用剪刀剪切、用吸管吹打分散組織細(xì)胞或?qū)⒁殉浞旨羲榉稚⒌慕M織放在注射器內(nèi)

                          (用九號針),使細(xì)胞通過針頭壓出,或在不銹鋼紗網(wǎng)內(nèi)用鈍物壓擠(常用注射器鈍端)使細(xì)胞從網(wǎng)孔中壓擠出。此法分離細(xì)胞雖然簡便、快速

                          ,但對組織機(jī)械損傷大,而且細(xì)胞分散效果差。此法僅適用于處理纖維成分少的軟組織。


                          (二)消化分離法


                          組織消化法是把組織剪切成較小團(tuán)塊(或糊狀),應(yīng)用酶的生化作用和非酶的化學(xué)作用進(jìn)一步使細(xì)胞間的橋連結(jié)構(gòu)松動,使團(tuán)塊膨松,

                          由塊狀變成絮狀,此時(shí)再采用機(jī)械法,用吸管吹打分散或電磁攪拌或在搖珠瓶中振蕩,使細(xì)胞團(tuán)塊得以較充分的分散,制成少量細(xì)胞群團(tuán)和

                          大量單個細(xì)胞的細(xì)胞懸液,接種培養(yǎng)后,細(xì)胞容易貼壁生長。


                          注意事項(xiàng)如下

                          1)組織塊必須漂洗 2-3 次以除去組織中的鈣、鎂離子和血清對胰蛋白酶和 EDTA 的抑制作用。


                          2)胰蛋白濃度不宜過高,作用時(shí)間不能太長,以避免毒性作用。


                          3)消化后組織不僅要盡量棄去消化液,以避免毒性產(chǎn)生,而且動作要輕,以避免膨松的細(xì)胞隨漂洗而丟失


                          三、酶消化法

                          1)無菌確保使用無菌設(shè)備、試劑和技術(shù)收集和處理組織。使用個人防護(hù)設(shè)備以避免污染。使用0.22微米的膜無菌過濾所有酶和試劑。


                          2)切塊用無菌剪刀或手術(shù)刀將組織標(biāo)本切成小塊(通常為2×4mm),然后將小塊放入選定的緩沖液、培養(yǎng)基或鹽溶液中。


                          3)加酶將組織清洗三次以消除多余的血液蛋白,然后加入您選擇的酶如膠原酶、蛋白酶、木瓜蛋白酶或胰蛋白酶。通常,約0.5 mg/ml~1.5mg/ml的酶。


                          4)孵育將組織樣本在其最佳溫度下孵育,通常在37℃下孵育30~90分鐘。定期混合或輕輕搖動標(biāo)本。


                          5)洗滌通過輕輕移液來分散細(xì)胞(也稱為研磨),然后,使用細(xì)網(wǎng)過濾細(xì)胞懸浮液。讓細(xì)胞沉淀并潷出多余的含液酶;洗兩到三次。含有FBS,BSA或其他抑制劑的洗滌溶液也可用于阻止酶消化。


                          6)分析將細(xì)胞重懸于正確的培養(yǎng)基或緩沖液中,然后定量測定細(xì)胞產(chǎn)量和活力。這是細(xì)胞分離過程中的重要步驟,因此您可以評估解離技術(shù)的結(jié)果。

                          大多數(shù)研究人員使用血細(xì)胞計(jì)數(shù)器測定細(xì)胞產(chǎn)量,并使用臺盼藍(lán)重氮染料測量細(xì)胞活力。


                          7)培養(yǎng)這個適合,就可以根據(jù)所分離的細(xì)胞來選擇適合研究的方案和處理步驟來培養(yǎng)細(xì)胞了。


                          重點(diǎn)注意事項(xiàng)


                          1)使用細(xì)胞分離酶時(shí),請注意溫度和濕度條件。如蛋白水解酶可以自動分解,因此建議在使用前立即將其溶解,并在冰上保存2℃~8℃。


                          2)通常用于細(xì)胞分離的大多數(shù)酶可以直接溶解于平衡鹽溶液或所選緩沖液中。對于許多細(xì)胞分離中,確保解離期間的組織存活,需要孵育培養(yǎng)基充分氧化并在生理pH下緩沖。95%O2、5%CO2平衡的介質(zhì)來完成。


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